Impacto da origem botânica na composição química de méis monoflorais amazônicos produzidos por Apis melífera
Resumo
A apicultura desempenha um papel significativo na economia do norte do Brasil, sendo o mel o principal produto. Devido à sua vasta biodiversidade, a região amazônica oferece uma ampla variedade de fontes florais para a produção de mel. O mel monofloral é obtido predominantemente do néctar de uma única espécie floral, conferindo características distintas como cor, aroma e sabor. Portanto, este estudo teve como objetivo analisar e comparar três amostras de mel de Apis mellifera coletadas no estado do Pará: méis monoflorais de açaí (Euterpe oleracea), laranjeira (Citrus × sinensis) e mangue (Rhizophora mangle L.). A análise polínica foi realizada para identificar a origem botânica e confirmar a classificação monofloral. As amostras foram avaliadas quanto aos parâmetros físico-químicos, todos em conformidade com a legislação vigente. O teor de minerais e os níveis de prolina também foram determinados, apresentando valores consistentes com a literatura. A composição bioativa foi avaliada por meio de análises de compostos fenólicos totais (50,5 a 168.08 mg EAG/ g), flavonoides (8,08 A 38,01 mg EQ/100 g), antocianinas (0,26 a 2,07 mg/ g), capacidade antioxidante ABTS (1,1 a 3,1 µM ET/g), FRAP (2,38 a 5,72 µM ESF/ g) e DPPH (0,26 a 0,55 µM ET/ g). Dentre as amostras, o mel de Euterpe oleracea apresentou os maiores valores bioativos e antioxidantes, superando os demais méis sendo descrito através da análise de dados, o que destaca o notável potencial apícola da região amazônica.
Palavras-chave: açaí; Amazônia; apicultura; compostos bioativos.
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Referências
1. Gois GC, Lima CAB, Silva LT, Rodrigues AE. Composição do mel de Apis mellifera: requisitos de qualidade. Acta Vet Bras. 2013;7(2):137-47. Available at: https://doi.org/10.21708/avb.2013.7.2.3009
2. Jaffé R, Pope N, Carvalho AT, Maia UM, Blochtein B, Carvalho CAL, et al. Bees for development: Brazilian survey reveals how to optimize stingless beekeeping. PLoS One. 2015;10:e0130111. Available at: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0130111
3. Louveaux J, Maurizio A, Vorwohl G. Methods of melissopalynology. Bee World. 1978;59(4):139-57. Available at: https://doi.org/10.1080/0005772X.1978.11097714
4. Da Silva PM, Gauche C, Gonzaga LV, Costa ACO, Fett R. Honey: chemical composition, stability and authenticity. Food Chem. 2016;196:309-23. Available at: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.09.051
5. White JW Jr. Honey. Adv Food Res. 1978;24:287-374. Available at: https://doi.org/10.1016/S0065-2628(08)60160-3
6. Silva SMPC, Andrade WC, Santos PC, Nascimento AS, Carvalho CAL. Bioactive compounds and antioxidant potential of honey produced by Africanized bees (Apis mellifera L.) in Piauí. Sci Electron Arch. 2020;13(9):10-18. Available at: https://doi.org/10.36560/13920201061
7. Nogueira AKM, Santana ACD. Benefícios socioeconômicos da adoção de novas tecnologias no cultivo do açaí no Estado do Pará. Rev Ceres. 2016;63(1):1-7. Available at: https://doi.org/10.1590/0034-737X201663010001
8. Do Nascimento OR, Cardoso LAS, de Oliveira Ferreira EV, da Cunha IDCM, do Nascimento Santos J, dos Santos ARN, et al. Utilization of multispectral imagery in orange trees cultivated with agricultural gypsum application in Eastern Amazon. J Indian Soc Remote Sens. 2026:1-13. Available at: https://doi.org/10.1007/s12524-026-02465-3
9. Hayashi SN, Souza-Filho PWM, Nascimento Junior WR, Fernandes ME. Status of mangroves land use on the Brazilian Amazon coast from RapidEye imagery and GEOBIA approach. An Acad Bras Cienc. 2023;95(2):e20210468. Available at: https://doi.org/10.1590/0001-3765202320210468
10. Pires AP, Pacheco A, Martorano LG, Neto JM, de Moraes JRDSC, Aparecido LEDO. Evaluation of the honey and pollen yield of Melipona interrupta bee colonies in the Amazon region. Aust J Crop Sci. 2020;14(3):455-61. Available at: https://doi.org/10.21475/ajcs.20.14.03.p1991
11. Menezes BAD, Mattietto RA, Lourenço L de FH. Avaliação da qualidade de méis de abelhas africanizadas e sem ferrão nativas do nordeste do estado do Pará. Cienc Anim Bras. 2018;19. Available at: https://doi.org/10.1590/1809-6891v19e-46578
12. De Freitas EPB, Craveiro RS, De Assunção JMB, Dos Santos Lopes YM, Junior ENM, De Souza RF. Caracterização físico-química em méis de abelhas produzidos no município de Cachoeira do Arari–Ilha de Marajó, Pará. Res Soc Dev. 2022;11(3). Available at: https://doi.org/10.33448/rsd-v11i3.26532
13. Muto NA, Oliveira de Sousa Leite R, Santiago Pereira D, Ghislain Rogez HL, Cristino Venturieri G. Impact of the introduction of stingless bee colonies (Scaptotrigona aff. postica) on the productivity of açaí (Euterpe oleracea). Rev Verde Agroecol Desenvolv Sustent. 2020;15(3). Available at: https://doi.org/10.18378/rvads.v15i3.8404
14. Barth OM. O pólen no mel brasileiro. Rio de Janeiro: Gráfica Luxor; 1989.
15. Ybert JP, Bove CP, Carvalho MA. Esporos e grãos de pólen de plantas aquáticas da zona litoral do Sudeste do Brasil. Série Livros Digital; 2017.
16. Association of Official Analytical Chemists. Official methods of analysis. 18th ed. Gaithersburg: Association of Official Analytical Chemists; 2005.
17. White JW Jr. Spectrophotometric method for hydroxymethylfurfural in honey. J Assoc Off Anal Chem. 1979;62(3):509-14. Available at: https://doi.org/10.1093/jaoac/62.3.509
18. Bogdanov S, Martin P, Lüllmann C. Harmonised methods of the European Honey Commission. Apidologie. 1997;28:42-4.
19. Bianchi SM. La miel, características y composición: análisis y adulteraciones. Santiago del Estero: UNSE-CEDIA; 1981.
20. Miller GL. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Anal Chem. 1959;31(3):426-8. Available at: https://doi.org/10.1021/ac60147a030
21. Bogdanov S, Martin P, Lullmann C. Harmonised methods of the International Honey Commission. Liebefeld: Swiss Bee Research Centre, FAM; 2002. p. 1-62.
22. Ghorab A, Rodríguez-Flores MS, Nakib R, Escuredo O, Haderbache L, Bekdouche F, et al. Sensorial, melissopalynological and physico-chemical characteristics of honey from Babors Kabylia's region (Algeria). Foods. 2021;10(2):225. Available at: https://doi.org/10.3390/foods10020225
23. Ough C. Rapid determination of proline in grapes and wines. J Food Sci. 1969;34(3):228-30. Available at: https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.1969.tb10327.x
24. Bogdanov S, Lüllmann C, Martin P, von der Ohe W, Russmann H, Vorwohl G, et al. Honey quality and international regulatory standards: review by the International Honey Commission. Bee World. 1999;80(2):61-9. Available at: https://doi.org/10.1080/0005772X.1999.11099428
25. Singleton VL, Orthofer R, Lamuela-Raventós RM. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent. Methods Enzymol. 1999;299:152-78. Available at: https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1
26. Chang CC, Yang MH, Wen HM, Chern JC. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. J Food Drug Anal. 2002;10:178-82. Available at: https://doi.org/10.38212/2224-6614.2748
27. Francis FJ. Analysis of anthocyanins in foods. In: Markakis P, editor. Anthocyanins as food colors. New York: Academic Press; 1982. p. 181-207.
28. Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic Biol Med. 1999;26:1231-7. Available at: https://doi.org/10.1016/S0891-5849(98)00315-3
29. Benzie IFF, Strain JJ. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": the FRAP assay. Anal Biochem. 1996;239(1):70-6. Available at: https://doi.org/10.1006/abio.1996.0292
30. Mensor LL, Menezes FS, Leitão GG, Reis AS, Santos TCD, Coube CS, et al. Screening of Brazilian plant extracts for antioxidant activity by the use of DPPH free radical method. Phytother Res. 2001;15(2):127-30. Available at: https://doi.org/10.1002/ptr.687
31. Bergamo G, Seraglio SKT, Gonzaga LV, Fett R, Costa ACO. Physicochemical characteristics of bracatinga honeydew honey and blossom honey produced in the state of Santa Catarina: an approach to honey differentiation. Food Res Int. 2019;116:745-54. Available at: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2018.09.007
32. Feás X, Pires J, Iglesias A, Estevinho ML. Characterization of artisanal honey produced on the Northwest of Portugal by melissopalynological and physicochemical data. Food Chem Toxicol. 2010;48(12):3462-70. Available at: https://doi.org/10.1016/j.fct.2010.09.024
33. do Nascimento KS, Sattler JAG, Macedo LFL, González CVS, de Melo ILP, Araújo ES, et al. Phenolic compounds, antioxidant capacity and physicochemical properties of Brazilian Apis mellifera honeys. LWT Food Sci Technol. 2018;91:85-94. Available at: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2018.01.016
34. Codex Alimentarius. Standard for honey: CXS 12-1981. Adopted in 1981. Revised in 1987, 2001. Amended in 2019, 2022. Rome: FAO/WHO; 2022.
35. Brunelli LT, Imaizumi VM, Venturini Filho WG. Caracterização físico-química, energética e sensorial de hidromel produzido a partir de cinco tipos de leveduras alcoólicas. Energ Agric. 2017;32(2):200-8. Available at: https://doi.org/10.17224/EnergAgric.2017v32n2p200-208
36. De Maria CAB, Moreira RFA. Compostos voláteis em méis florais. Quim Nova. 2003;26:90-6. Available at: https://doi.org/10.1590/S0100-40422003000100016
37. Lira AF, De Mello Sousa JPL, Lorenzon MCA, Vianna CAFJ, Castro RN. Estudo comparativo do mel de Apis mellifera com méis de meliponíneos de diferentes regiões. Acta Vet Bras. 2014;8(3):169-78. Available at: https://doi.org/10.21708/AVB.2014.8.3.3560
38. Munitis MT, Cabrera E, Rodriguez-Navarro A. An obligate osmophilic yeast from honey. Appl Environ Microbiol. 1976;32(3):320-3. Available at: https://doi.org/10.1128/aem.32.3.320-323.1976
39. Rodríguez-Flores MS, Escuredo O, Seijo-Rodríguez A, Seijo MC. Characterization of the honey produced in heather communities (NW Spain). J Apic Res. 2019;58(1):84-91. Available at: https://doi.org/10.1080/00218839.2018.1495417
40. Ramalhosa E, Gomes T, Pereira AP, Dias T, Estevinho LM. Mead production: tradition versus modernity. In: Advances in food and nutrition research. Academic Press; 2011. p. 101-18. Available at: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384927-4.00004-X
41. White JW. The role of HMF and diastase assays in honey quality evaluation. Bee World. 1994;75(3):104-17. Available at: https://doi.org/10.1080/0005772X.1994.11099213
42. Mouhoubi-Tafinine Z, Ouchemoukh S, Bachir Bey M, Louaileche H, Tamendjari A. Effect of storage on hydroxymethylfurfural (HMF) and color of some Algerian honey. Int Food Res J. 2018;25(3):1044-50.
43. Tuberoso CIG, Jerković I, Sarais G, Congiu F, Marijanović Z, Kuś PM. Color evaluation of seventeen European unifloral honey types by means of spectrophotometrically determined CIE LCabhab° chromaticity coordinates. Food Chem. 2014;145:284-91. Available at: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.08.032
44. Bouhlali EDT, Bammou M, Sellam K, El Midaoui A, Bourkhis B, Ennassir J, et al. Physicochemical properties of eleven monofloral honey samples produced in Morocco. Arab J Basic Appl Sci. 2019;26(1):476-87. Available at: https://doi.org/10.1080/25765299.2019.1687119
45. Gürbüz S, Çakıcı N, Mehmetoğlu S, Atmaca H, Demir T, Arıgül Apan M, et al. Physicochemical quality characteristics of Southeastern Anatolia honey, Turkey. Int J Anal Chem. 2020;2020:8810029. Available at: https://doi.org/10.1155/2020/8810029
46. Adalina Y, Heryati Y. Characteristics of mangrove honey from the Komodo National Park Area and Kubu Raya Protected Forest. EurAsian J BioSci. 2019;13(2):2407-15.
47. Shamsudin S, Selamat J, Sanny M, Abd Razak SB, Jambari NN, Mian Z, et al. Influence of origins and bee species on physicochemical, antioxidant properties and botanical discrimination of stingless bee honey. Int J Food Prop. 2019;22(1):239-64. Available at: https://doi.org/10.1080/10942912.2019.1576730
48. Da Costa IF, Toro MJU. Evaluation of the antioxidant capacity of bioactive compounds and determination of proline in honeys from Pará. J Food Sci Technol. 2021;58(5):1900-8. Available at: https://doi.org/10.1007/s13197-020-04701-1
49. Grosso GS, Tangarife MPO, Méndez LMR. Propiedades fisicoquímicas de mieles monoflorales de encenillo de la zona altoandina en Boyacá, Colombia. Quim Nova. 2017;40:854-64. Available at: https://doi.org/10.21577/0100-4042.20170084
50. Coronado Jorge MF, Ormeño Luna J, Barrera Lozano M, Castillo Díaz T. Physicochemical characters in honeys from the ecosystem of Bajo Mayo, San Martín Region, Peru. Arnaldoa. 2019;26(2):607-22. Available at: https://doi.org/10.22497/arnaldoa.262.26206
51. Sales KLS, De Lima Barbosa K, Nascimento AB, Aguiar GC, Vasconcelos ÁV, Liberato MDCTC. Caracterização de minerais em méis de abelhas Apis mellifera L. e Melipona subnitida D. em diferentes regiões do Ceará. Cienc Tecnol Alim. 2020;9:6. Available at: https://doi.org/10.36229/978-65-5866-031-6.CAP.01
52. Mărgăoan R, Topal E, Balkanska R, Yücel B, Oravecz T, Cornea-Cipcigan M, et al. Monofloral honeys as a potential source of natural antioxidants, minerals and medicine. Antioxidants. 2021;10(7):1023. Available at: https://doi.org/10.3390/antiox10071023
53. Sajid M, Yamin M, Asad F, Yaqub S, Ahmad S, Mubarik MAMS, et al. Comparative study of physio-chemical analysis of fresh and branded honeys from Pakistan. Saudi J Biol Sci. 2020;27(1):173-6. Available at: https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2019.06.014
54. Meda A, Lamien CE, Romito M, Millogo J, Nacoulma OG. Determination of total phenolic, flavonoid and proline contents in Burkina Fasan honey, as well as their radical scavenging activity. Food Chem. 2005;91:571-7. Available at: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2004.10.006
55. Wisniewski J, Hacke ACM, Mazer Etto R, Boligon AA, Takeda I, Marques JA, et al. Evaluation of the antioxidant activity and phenolic composition of different monofloral and polyfloral Brazilian honey extracts. Chem Biodivers. 2024;21(9):e202400971. Available at: https://doi.org/10.1002/cbdv.202400971
56. Galhardo D, Garcia RC, Schneider CR, Braga GC, Chambó ED, França DLBD, et al. Physicochemical, bioactive properties and antioxidant of Apis mellifera L. honey from western Paraná, Southern Brazil. Food Sci Technol. 2020;41:247-53. Available at: https://doi.org/10.1590/fst.11720
57. Bueno-Costa FM, Zambiazi RC, Bohmer BW, Chaves FC, Da Silva WP, Zanusso JT, et al. Antibacterial and antioxidant activity of honeys from the state of Rio Grande do Sul, Brazil. LWT Food Sci Technol. 2016;65:333-40. Available at: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2015.08.018
58. Nayaka NMD, Fidrianny I, Hartati R, Singgih M. Antioxidant and antibacterial activities of multiflora honey extracts from the Indonesian Apis cerana bee. J Taibah Univ Med Sci. 2020;15(3):211-7. Available at: https://doi.org/10.1016/j.jtumed.2020.04.005
59. Srećković NZ, Mihailović VB, Katanić-Stanković JS. Physico-chemical, antioxidant and antimicrobial properties of three different types of honey from central Serbia. Kragujevac J Sci. 2019;41:53-68. Available at: https://doi.org/10.5937/KgJSci1941053S
60. Sant'Ana LDO, Buarque Ferreira AB, Lorenzon MCA, Berbara RLL, Castro RN. Correlation of total phenolic and flavonoid contents of Brazilian honeys with colour and antioxidant capacity. Int J Food Prop. 2014;17(1):65-76. Available at: https://doi.org/10.1080/10942912.2011.614368
61. Habryka C, Socha R, Juszczak L. The effect of enriching honey with propolis on the antioxidant activity, sensory characteristics, and quality parameters. Molecules. 2020;25(5):1176. Available at: https://doi.org/10.3390/molecules25051176
62. Zhang P, Zhu H. Anthocyanins in plant food: current status, genetic modification, and future perspectives. Molecules. 2023;28(2):866. Available at: https://doi.org/10.3390/molecules28020866
63. Seraglio SKT, Schulz M, Brugnerotto P, Silva B, Gonzaga LV, Fett R, et al. Quality, composition and health-protective properties of citrus honey: a review. Food Res Int. 2021;143:110268. Available at: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2021.110268
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