AVALIAÇÃO DE SEGURANÇA E ANALGESIA DE PROTOCOLOS ANESTÉSICOS PARA ELETROEJACULAÇÃO EM GATOS DOMÉSTICOS (Felis catus)

 

 

¹Laboratório de Reprodução de Carnívoros, Faculdade de Veterinária-UECE, Fortaleza, CE - ticifranco@hotmail.com

²Médica Veterinária Autônoma, Fortaleza, CE

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RESUMO

O objetivo deste trabalho foi avaliar a segurança e analgesia dos protocolos anestésicos usualmente empregados para eletroejaculação (EEJ) de gatos domésticos. Quatorze gatos foram anestesiados com 4 protocolos e submetidos a 3 séries de choques elétricos (2-6 mA). Os parâmetros de frequência cardíaca, respiratória, temperatura, sensibilidade dolorosa e reflexo palpebral foram aferidos antes e após a indução da anestesia e durante e após a eletroejaculação. O protocolo de anestesia com isoflurano foi o que melhor promoveu analgesia, segurança e rapidez na recuperação para EEJ em gatos domésticos.
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PALAVRAS-CHAVE: Eletroejaculação; gato; anestesia.

 

EVALUATION OF SECURITY AND ANALGESIA OF ANESTHETICS PROTOCOLS FOR ELECTROEJACULATION IN DOMESTIC CATS (Felis catus)

 

ABSTRACT

The objective of this study was to evaluate the security and analgesia of anesthetics protocols usually used for electroejaculation (EEJ) in domestic cats. Fourteen toms were anesthetized with 4 protocols and submitted to a 3 series of electric stimuli (2-6 mA). The heart rate, respiratory rate, temperature, pain sensibility and eyes blink were analyzed prior and after induction, and during and after electroejaculation. The anesthesia protocol that used isoflurane was the best for analgesic parameters, security and speed of recuperation for electroejaculation in domestic cats
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KEYWORDS: Electroejacutation; cat; anesthesia.

INTRODUÇÃO

 A eletroejaculação (EEJ) foi desenvolvida em 1936 para ovinos, mas na década de 70 teve uso científico relatado para gatos domésticos (PLATZ & SEAGER, 1978; MIES FILHO, 1982), sendo considerado o método de eleição para obtenção de sêmen felino, especialmente para felídeos silvestres, já que permite o manuseio do animal vivo (MORAIS et al., 2002). Esse método possibilita análises andrológicas em animais de alto valor genético ou animais silvestres que não permitem avaliação sem anestesia devido à sua agressividade ou por não serem treinados para ejaculação em vagina artificial (MORATO & BARNABE, 1998) e baseia-se na indução do reflexo ejaculador através de estímulos elétricos, com a introdução de uma sonda trans-retal conectada a um estimulador elétrico, no assoalho da ampola retal do animal (SILVA et al., 2004a).

Diferentes protocolos de estímulos elétricos já foram desenvolvidos para pelo menos 28 espécies de felídeos. Nos métodos utilizados para o gato doméstico, após anestesia, são aplicados 80 estímulos elétricos divididos em três séries, fornecendo-se de 2 a 6V (WILDT et al.,1983; HOWARD, 1999).

A EEJ é considerada pela maior parte dos autores um procedimento simples, rápido e prático (PLATZ & SEAGER, 1978; MORAIS et al., 2002; MORATO et al., 2002). Embora os primeiros estudos em felinos silvestres tenham sido realizados somente com a contenção física sem auxílio de anestesia (CARVALHO, 1968; MIES FILHO et al., 1974), como é realizado para animais de produção, a EEJ em felinos, seja em domésticos ou silvestres, necessita da aplicação de anestésicos para contenção do animal, evitando riscos à equipe, mas expondo o animal aos riscos envolvidos no procedimento anestésico.

Dentre os protocolos anestésicos mais utilizados para EEJ em gatos domésticos e felídeos silvestres encontram-se o uso de cloridrato de cetamina (PLATZ & SEAGER, 1978) e as associações de cloridrato de cetamina e xilazina (MORAIS et al., 2002) e tiletamina e zolazepam (MORAIS et al., 2002; MORATO et al., 2002; TEBET et al., 2006). Outros fármacos utilizados isoladamente ou em associações também já foram utilizados com esse propósito para gatos domésticos, tais como: tiletamina, zolazepam e morfina; tiletamina, zolazepam, butorfanol e acepromazina (TEBET et al., 2006); cetamina e medetomidina (AXNÉR et al., 1998; ZAMBELLI et al., 2007); propofol (CHATDARONG et al., 2006); propofol e buprenofina (CHATDARONG et al., 2006); indução anestésica com propofol e anestesia epidural com lidocaína (LEITE et al., 2006), ou anestesia inalatória com indução anestésica à base de cetamina ediazepame e manutenção anestésica com isoflurano (SILVA et al., 2008). Além do variável número de combinações farmacológicas, observam-se também variações de doses entre autores. O uso de diferentes associações em diferentes doses torna difícil a comparação da eficiência entre os protocolos mais utilizados, bem como dos efeitos fisiológicos causados pelas combinações farmacológicas utilizadas.

Após constatar-se que há grande variedade nos protocolos anestésicos utilizados para EEJ em gatos domésticos, o objetivo deste trabalho foi avaliar quatro diferentes associações anestésicas, em relação à manutenção dos parâmetros fisiológicos promovendo analgesia, segurança e rapidez de recuperação para EEJ em gatos domésticos.

 MATERIAL E MÉTODOS

 Foram previamente selecionados para a etapa 1 do experimento 14 gatos machos púberes sem raça definida (SRD), com peso entre 3 e 5 Kg, provenientes do gatil experimental da Universidade Estadual do Ceará (3º 44’ de latitude Sul e 38° 34’ de longitude Oeste), submetidos a 12 horas diárias de luz natural. Os animais foram mantidos em gaiolas individuais e alimentados com ração comercial de manutenção para gatos (Kitekat^®- Éffem^®, Brasil), recebendo água potável à vontade. O presente estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética da instituição, como parte de um projeto maior para estudo da qualidade seminal de gatos.

Os mesmos animais foram submetidos a uma coleta por EEJ para cada protocolo anestésico testado, respeitando-se intervalo mínimo de 15 dias entre cada coleta do mesmo animal. Os animais foram previamente submetidos a jejum alimentar de 24h e hídrico de 12h e, após serem pesados, foram contidos farmacologicamente com associações de cloridrato de cetamina e xilazina (protocolo A); cloridrato de tiletamina e zolazepam (protocolo B); cloridrato de tiletamina e zolazepam tramadol (protocolo C); ou indução da anestesia com cloridarato de cetamina e diazepam e manutenção com isoflurano (protocolo D) (Tabela 1). Quando necessário, após a indução anestésica e antes da intubação, os animais eram submetidos à máscara com isoflurano dissolvido em oxigênio medicinal. Para a intubação foi utilizada lidocaína spray a 10% para dessensibilização da laringe, cânulas de 4 ou 4,5 mm de diâmetro interno, e circuito semi-aberto de Baraka, conectados a um vaporizador universal. Após a perda do reflexo de endireitamento postural, uma veia foi canulada para administração de soro fisiológico 0,9% (NaCl), permitindo a reposição do anestésico por via intravenosa na velocidade de 22 gotas/min até o erguimento espontâneo da cabeça e tentativa  por parte do animal de levantar-se.

As frequência cardíaca (bpm) e respiratória (mrm), a temperatura retal (°C), a sensibilidade dolorosa e o reflexo palpebral foram aferidos antes da anestesia, após 10 minutos da aplicação de todos os fármacos, durante as séries de choques elétricos, em cada intervalo de série de choques e aos 5, 10, 30 e 60 minutos após o término da última série de choques. Em todos os procedimentos anestésicos, os animais foram acompanhados quanto aos parâmetros fisiológicos citados até a tentativa espontânea de erguer a  cabeça e manter-se na posição de estação. A sensibilidade dolorosa foi avaliada através da avaliação de parâmetros como reflexo de retração ao pinçamento interdigital dos membros anteriores ou posteriores; vocalização perceptível na caixa torácica ao momento da auscultação ou vocalização audível sem auxílio de aparelhos.A entrada em plano anestésico era considerada quando o animal não mais apresentava sensibilidade dolorosa. A qualquer momento da EEJ no qual o plano anestésico não fosse mantido, a suplementação da anestesia era realizada por via intravenosa (IV) com metade da dose inicial calculada, até obtenção do plano anestésico ideal. Para o protocolo C, somente a combinação tiletamina e zolazepam foi complementada.

Os protocolos anestésicos utlizados em cada animal foram distribuídos de forma aleatória, não havendo uma sequência pré-definida.

Na segunda etapa foram utilizados 4 gatos adultos, dos quais 1 já havia participado da etapa 1. Foi procedido 1 protocolo anestésico anteriormente descrito por animal (protocolo A, n = 1; B, n = 1; C, n = 1; D, n =1). Realizou-se monitoração contínua da saturação funcional de oxigênio (SpO₂), utilizando-se oxímetro de pulso digital, através de  sensor localizado na língua do animal nos momentos após a anestesia antes dos choques elétricos, durante, nos intervalos, e após os choques elétricos. O equipamento facilitou o monitoramento da frequência cardíaca e permitiu a visualização da representação gráfica de ondas pletismográficas com derivação DII (Oxifast 9504^®, Takaoka^®), permitindo um melhor acompanhamento de possíveis alterações cardíacas e respiratórias ao longo da EEJ.

Para a obtenção do sêmen foi utilizado um eletroejaculador portátil (Eletrojet^®-Electrovet^®-Brasil), acoplado a uma sonda trans-retal (13 x 1 cm) com os eletrodos voltados para o assoalho da ampola retal, previamente lubrificado com gel inócuo à base de um polímero carboxivinílico. Após a entrada em plano anestésico, o reto foi limpo de bolos fecais e a sonda introduzida cerca de 5 a 7 cm no reto dos animais e, então, foram aplicados 80 estímulos elétricos divididos em 3 séries. Na primeira série, 10 estímulos sucessivos de 20, 30 e 40 mA. Na segunda, 10 estímulos de 30, 40 e 50 mA e na terceira, estímulos de 50 e 60 mA. Cada estímulo elétrico durou entre 2 e 3 segundos e, entre cada série, foi realizado um intervalo de 5 minutos.

Os parâmetros fisiológicos das frequência cardíaca, respiratória e temperatura retal antes e após anestesia até 60 min pós-EEJ foram expressos na forma de média ± erro padrão. O reflexo palpebral e a sensiblidade dolorosa foram descritos subjetivamente. Os parâmetros frequência cardíaca, respiratória e temperatura retal após anestesia até 60 min pós-EEJ foram comparados entre os protocolos por ANOVA, seguido de teste de Fisher PLSD. Para todos os parâmetros, considerou-se p<0,05 (Stat View for Windows^®, SAS Institute Inc., Versão 5.0, 1998).

 

RESULTADOS E DISCUSSÃO

 

Considerando-se que o gato doméstico é modelo experimental para desenvolvimento de protocolos de conservação de sêmen a serem utilizados em programas de conservação de espécies felídeas ameaçadas de extinção, optou-se por quatro protocolos anestésicos que permitissem administração inicial através de via IM. Os parâmetros fisiológicos de frequência cardíaca, respiratória e temperatura não puderam ser aferidos em todos os animais. Por características próprias da espécie, alguns animais apresentavam-se inquietos e agressivos após o deslocamento do gatil ao laboratório, não permitindo a manipulação para aferição de temperatura e auscultação cardiorrespiratória; ou ainda, no sentido inverso, ronronando e não permitindo a aferição cardíaca. Em alguns casos, nos quais as aferições foram possíveis, o estresse também alterou sensivelmente a frequência respiratória, já que a frequência respiratória normal do gato não submetido à anestesia é de 20 a 30 mrm (KELLY, 1986). Assim, as comparações estatísticas dos parâmetros fisiológicos só foram realizadas a partir de 10 min após a anestesia. Os resultados obtidos após a anestesia e durante a EEJ para frequência cardíaca e respiratória e temperatura retal encontram-se descritos na Tabelas 2, 3 e 4,  respectivamente.

Após 60 min do final da EEJ, em todos os protocolos testados, os valores de temperatura encontravam-se em limites aceitáveis para gatos que foram submetidos a procedimentos anestésicos, não denotando significado clínico relevante, haja vista que a diminuição de temperatura é esperada com o uso das associações de cetamina e xilazina e tiletamina e zolpazepam (SANTOS et al., 2004). Segundo ERDMANN (2005), os valores de temperatura obtidos no presente trabalho durante a EEJ encontram-se dentro do limite de segurança para felídeos.

O reflexo palpebral esteve presente ao longo de toda anestesia nos protocolos B e C; todavia, no protocolo A, observou-se diminuição desse reflexo em 1 animal e ausência antes da EEJ em outro animal, que foi recuperado após o início da EEJ. No protocolo D, o reflexo palpebral alternou ausência e presença ao longo da EEJ em 13 dos 14 animais testados. Considerando-se que a manutenção do reflexo palpebral é desejada nas anestesias dissociativas e se constitui em um bom indicativo do não aprofundamento indesejado da anestesia, as observações no protocolo D com presença de reflexo indicam que o plano anestésico não estava sendo alcançado satisfatoriamente ao longo de toda a EEJ (ANDRADE et al., 2002).

Como o protocolo de anestesia inalatória (D) fez uso da intubação do animal para fornecimento de oxigênio medicinal e permitiu a regulação do volume de anestésico a ser fornecido ao paciente, a ocorrência e consequente manutenção do animal em bradipinéia, como ocorrido no protocolo D durante os choques, ou sem reflexo palpebral, é menos preocupante do ponto de vista anestésico que nos protocolos A e C, desde que mantidos batimentos cardíacos regulares, como apresentado. O uso da combinação cetamina e xilazina é uma prática comum na anestesia de pequenos animais, embora o grau de analgesia possa ser questionável de acordo com o procedimento (FANTONI et al., 1999). Sabidamente, a xilazina apresenta efeitos cardiopulmonares que incluem bradicardia, redução do débito cardíaco e aumento inicial da pressão arterial seguido de hipotensão duradoura, devido aos seus efeitos sedativos de α-2 agonista, os quais nem sempre são contrabalançados pela ação simpatomimética da cetamina usada em associação anestésica com a xilazina (ANDRADE et al., 2002). Assim como afirmado por ERDMANN (2005), com o uso da combinação xilazina com tiletamina e zolazepam para EEJ, um menor controle da dor com os protocolos A, B e C podem justificar as elevações de frequência cardíaca e respiratória em vários momentos de observação. Os valores obtidos para frequência cardíaca estão dentro dos limites normais para gatos domésticos submetidos à anestesia (CISTOLA et al., 2004).

A adição do tramadol à combinação tiletamina e zolazepam (protocolo C) foi usada em substituição à morfina utilizada na combinação anestésica anteriormente descrita por TEBET et al. (2006) para EEJ de gatos domésticos. Esses autores não descreveram os efeitos dessa associação ao longo da EEJ e detiveram-se aos aspectos de coleta seminal e criopreservação. Tebet (2004) citou que o protocolo tiletamina, zolazepam e morfina foi considerado mais adequado à EEJ de gatos domésticos do que a mesma associação sem o uso de opióide pois, além dos resultados satisfatórios de colheita de sêmen, promoveu tranquilidade dos animais sem ocorrências de vocalização ou quaisquer sinais de desconforto. A decisão de substituir a morfina pelo tramadol no protocolo testado no presente trabalho foi devida aos efeitos analgésicos similares dos dois fármacos, evitando os efeitos indesejados de bradicardia da morfina. Além disso, o tramadol possui apresentação comercial de mais fácil ascesso, podendo ser empregado futuramente com maior facilidade do que a combinação tiletamina, zolazepam e morfina. O tramadol ainda é pouco empregado clinicamente em gatos domésticos, mas já demonstrou ser bastante seguro para a espécie (CASSU & LUNA, 2003).

Interferências na auscultação cardíaca no momento da EEJ e arritmias transitórias logo após uma série de EEJ levaram à realização da Etapa 2 (Tabela 5), na qual se percebeu que a SpO₂ diminuiu considerável e abruptamente no momento dos choques elétricos no animal submetido à anestesia dissociativa com o protocolo A. A SpO₂, que estava em torno de 90 a 93%, caiu a 47 a 58%, considerado um valor preocupante durante uma anestesia; todavia, após o fim da EEJ, os valores retornaram aos valores iniciais. É possível que a queda na oxigenação seja dificultada pelas contrações abdominais e/ou torácicas que os animais apresentam no momento do choque elétrico em conjunto com a distensão dos membros posteriores. Isto pode constituir um risco quando o animal já possui limitações respiratórias não detectáveis antes da anestesia. No animal submetido ao protocolo B, os valores de SpO₂ de 78 a 97% após anestesia, mas antes do choque elétrico, decaíram a 59 a 86% durante a série de choques. No protocolo C os valores mantiveram-se praticamente constantes, entre 89 a 98%, antes e ao longo dos choques elétricos. No animal submetido ao protocolo D com anestesia inalatória também não foi observada queda preocupante na SpO₂ (82 a 98%); dessa forma, pode-se concluir que o comprometimento temporário dos movimentos respiratórios provavelmente não afetou a SpO_2, já que o animal continuou passivamente recebendo oxigênio medicinal (100%) via traqueotubo.

Quanto ao traçado da onda pletismográfica, foram observados traçados compatíveis com os protocolos utilizados, com presença de taquicardia sinusal nos protocolos dissociativos (NUNES, 2002). Contudo, no momento da EEJ, independentemente do protocolo utilizado, foram observados em alguns momentos traçados estranhos, que causaram impossibilidade de leitura. À auscultação logo após o final da série de EEJ no qual o traçado anormal era observado havia taquicardia sem evidências de arritmia, sugerindo interferência na leitura da condutividade elétrica do coração pelos estímulos elétricos gerados pelo equipamento utilizado para EEJ. As aferições em aparelhos desse tipo sofrem interferências com movimentos (MORATO et al., 2002). As arritmias transitórias observadas na Etapa 1 não foram evidenciadas em nenhum dos 4 animais utilizados na Etapa 2.

De todos os protocolos testados no presente estudo, somente a anestesia inalatória (protocolo D) foi capaz de eliminar a dor de forma efetiva, haja vista que a vocalização audível sem auxílio de aparelhos, um dos sinais mais evidentes de desconforto e dor, foi observada em 3, 2 e 2 animais dos respectivos protocolos A, B e C. Para eliminar a sensibilidade dolorosa, seja pelo reflexo de retração ao pinçamento interdigital, ou pela vocalização, foram necessárias novas aplicações dos fármacos dissociativos antes de iniciar a EEJ ou no seu transcurso. No protocolo A, 10 animais receberam uma única dose da combinação anestésica. No protocolo B, somente 1 animal não necessitou de complementação. No protocolo C, somente 2 não necessitaram de reforços. A necessidade de complementações anestésicas pode ser o desencadeante dos tempos de recuperação encontrados para os protocolos testados. No protocolo A, a tentativa espontânea de erguer a cabeça e manter-se na posição de estação foi observada entre 60 e 229 min após o final da EEJ, enquanto nos protocolos B e C, de 30 a 90 min, e no D, de 30 a 60 min. A recuperação anestésica foi acompanhada de intensa excitação em 1 animal nos protocolos A e B. Uma grande vantagem do uso do protocolo anestésico D, frente ao A, B e C é a alta potência do isoflurano e o maior controle do plano anestésico. A indução e recuperação são rápidas, além do fato de o efeito tempo não ser um limitante, já que, devido à sua baixa solubilidade do isoflurano, somente 0,2% do fármaco é biotransformado, gerando ausência de efeitos cumulativos e consequente baixa toxicidade renal e hepática (CASSU & LUNA, 2003).